Правила подготовки обследуемых и взятия биологического материала в клинико-диагностических лабораториях

Министерство здравоохранения Ставропольского края
Ставропольская государственная медицинская академия Кафедра клинической лабораторной диагностики ФПО
 Правила подготовки обследуемых и взятия биологического материала в клинико-диагностических лабораториях 

 “Утверждаю”
Заместитель министра здравоохранения Ставропольского края
_________________ Т.В. Коробова
 “Согласовано”
Главный внештатный специалист Ставропольского края по клинической лабораторной
_______________ П.А. Киркорова

 Ставрополь 2001

Согласно Приказу № 45 Министерства здравоохранения Российской Федерации от 07.02.2000 в каждой клинико-диагностической лаборатории (КДЛ) лечебно-профилактического учреждения должны быть подготовлено “Руководство по качеству исследований в КДЛ”. В это “Руководство” входят должностные инструкции медицинского персонала КДЛ и описание преаналитического долабораторного этапа анализа (инструкции по подготовке обследуемого и взятию биологического материала). Настоящее пособие подготовлено для облегчения работы над “Руководством” и создания единых типовых унифицированных инструкций для КДЛ ЛПУ Ставропольского края. При этом естественно подразумевается, что заведующие лабораторий при написании “Руководства” возьмут те инструкции или ту их часть, которые соответствуют объему и характеру работы в руководимых ими КДЛ.

Составители:

Ю.В. Первушин, заведующий кафедрой клинической лабораторной диагностики ФПО Ставропольской медакадемии,
П.А. Киркорова, главный внештатный специалист МЗ Ставропольского края по клинической лабораторной диагностике, заслуженный врач РФ,
Л.А. Марченко, доцент кафедры клинической лабораторной диагностики ФПО Ставропольской медакадемии,
Т.П. Бондарь, канд. мед. наук, ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФПО Ставропольской медакадемии,
Н.И. Ковалевич, ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФПО Ставропольской медакадемии,
В.Н. Иванова, ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФПО Ставропольской медакадемии.

ТИПОВЫЕ ИНСТРУКЦИИ

по правилам подготовки обследуемых и взятия биологического материала для «Руководства по качеству исследований в клинико-диагностической лаборатории» согласно приказу № 45 от 07.02.2000 «О системе мер по повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения Российской Федерации»)
Составлены на основании справочного пособия «Обеспечение качества лабораторных анализов» под редакцией В.В. Меньшикова, Москва, 1999

ВЗЯТИЕ, УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ДОСТАВКИ МАТЕРИАЛА ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ ОБЩЕКЛИНИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Методика взятия (сбора) мочи и подготовка пациента.
Сбор мочи практически для всех исследований больной проводит сам (исключение составляют дети, тяжело больные, а также необходимость катетеризации).
Время взятия. Для общего анализа мочу собирают утром натощак сразу после сна.
При исследовании утренней мочи (например, для общего анализа) собирают всю порцию утренней мочи (желательно, чтобы предыдущее мочеиспускание было не позже, чем в 2 ч ночи) в сухую, чистую, но не стерильную посуду, при свободном мочеиспускании. Перед сбором мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов. Лежачих больных предварительно подмывают слабым раствором марганцовокислого калия, затем промежность вытирают сухим стерильным ватным тампоном в направлении от половых органов к заднему проходу. У лежачих больных, собирая мочу, необходимо следить, чтобы сосуд был расположен выше промежности во избежание загрязнения из области анального отверстия.
Желательно использовать широкогорлый сосуд с крышкой, по возможности надо собирать мочу сразу в посуду, в которой она будет доставлена в лабораторию.
Мочу из судна, утки, горшка брать нельзя, так как даже после прополаскивания этих сосудов может сохраняться осадок фосфатов, способствующих разложению свежей мочи.
Если в лабораторию доставляется не вся собранная моча, то перед сливанием части ее необходимо тщательное взбалтывание, чтобы осадок, содержащий форменные элементы и кристаллы, не был утрачен.
Катетер или пункция мочевого пузыря могут быть использованы только в крайних случаях — у новорожденных, грудных детей, пациентов с заболеваниями простаты, иногда — для микробиологических исследований. ИЗ

ДЛИТЕЛЬНО СТОЯЩЕГО КАТЕТЕРА МОЧУ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ БРАТЬ НЕЛЬЗЯ!

Собранную мочу как можно быстрее доставляют в лабораторию. Крайне желательно в направлении отметить время взятия материала.
Собирание суточной мочи. Пациент собирает мочу в течение 24 ч на соблюдая обычный питьевой режим (1,5—2 л в сутки). Утром в 6—8 ч он освобождает мочевой пузырь (эту порцию мочи выливают), а затем в течение суток собирает всю мочу в чистый широкогорлый сосуд с плотно закрывающейся крышкой, емкостью не менее 2 л. Последняя порция берется точно в то же время, когда накануне был начат сбор (время начала и конца сбора отмечают). Если не вся моча направляется в лабораторию, то количество суточной мочи измеряют мерным цилиндром, отливают часть в чистый сосуд, в котором ее доставляют в лабораторию, и обязательно указывают объем суточной мочи.
Если для анализа требуется собрать мочу за 10—12 ч, сбор обычно проводят в ночное время: перед сном больной опорожняет мочевой пузырь и отмечает время (эту порцию мочи отбрасывают), затем больной мочится через 10—12 ч в приготовленную посуду, эту порцию мочи  доставляют для исследований в КДЛ. При невозможности удержать мочеиспускание 10—12 ч, больной мочится в приготовленную посуду в несколько приемов и отмечает время последнего мочеиспускания.
При необходимости сбора мочи за 2 или 3 ч, больной опорожняет мочевой пузырь (эта порция отбрасывается), отмечает время и ровно через 2 (или 3) часа собирает мочу для исследования.
При проведении пробы 3-х сосудов (стаканов) собирают утреннюю порцию мочи следующим образом: утром натощак после пробуждения и тщательного туалета наружных половых органов больной начинает мочиться в первый сосуд, продолжает во второй и заканчивает — в третий. Преобладающей по объему должна быть вторая порция. При проведении пробы 3-х сосудов у мужчин последнюю третью порцию мочи собирают после массажа предстательной железы. Все сосуды приготавливают предварительно, на каждом обязательно указывается номер порции.
В урологии у женщин чаще используют пробу 2-х сосудов, т. е делят при мочеиспускании мочу на две части, важно, чтобы первая часть в этом случае была небольшой по объему.

Условия хранения и доставки.
Длительное хранение мочи при комнатной температуре до исследования приводит к изменению физических свойств, разрушению клеток и размножению бактерий. Моча, собранная для общего анализа, может храниться не более 1,5—2 ч (ОБЯЗАТЕЛЬНО НА ХОЛОДУ!), применение консервантов нежелательно, но допускается, если между мочеиспусканием и исследованием проходит более 2 ч. Наиболее приемлемый способ сохранения мочи — охлаждение (можно хранить в холодильнике, но НЕ ДОВОДИТЬ ДО ЗАМЕРЗАНИЯ!). При охлаждении не разрушаются форменные элементы, но возможно влияние на результаты определения относительной плотности.
Примечания:
Мешающими факторами при исследовании многих химических компонентов мочи могут оказаться различные посторонние примеси (загрязнение) — бактериальные или химические. Источники этих примесей могут быть разные:
- в организме — интерференция лекарств (попадающие в мочу лекарства или их метаболиты могут мешать при химическом определении тех или иных компонентов в моче);
- во время мочеиспускания — возможно загрязнение мочи от гениталий (при неправильном сборе мочи);
- после взятия мочи (недостаточно чистая посуда, неправильное хранение — размножение бактерий и т.д.).
Нельзя исследовать мочу:
- во время менструации или кровотечений из области гениталий;
- после проведения цистоскопии анализ мочи можно назначать не ранее, чем через 5—7 дней.
    
ОСОБЕННОСТИ ВЗЯТИЯ, ДОСТАВКИ И ХРАНЕНИЯ МОЧИ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ОТДЕЛЬНЫХ КОМПОНЕНТОВ ПОДСЧЕТ ФОРМЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ В СУТОЧНОМ КОЛИЧЕСТВЕ МОЧИ ПО МЕТОДУ КАКОВСКОГО—АДДИСА

Исследуемый материал. 1 Суточная моча.
2. Моча, собранная за 10—12 ч (нужно отметить, что этот вариант сбора мочи значительно снижает точность результатов исследования).
Условия хранения: во время сбора хранить на холоду, в сосуд добавить консерванты: 4-5 капель формалина или 2-3 кристалла тимола.
Примечание. Больной в течение суток, предшествующих исследованию, должен получать мясную диету с ограничением количества жидкости, чтобы получить мочу кислой реакции и более высокой концентрации, так как нейтральная или щелочная реакция мочи, а также низкая относительная плотность могут привести к распаду форменных элементов (особенно гиалиновых цилиндров).
    
ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОЛИЧЕСТВА ФОРМЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ, ЭКСКРЕТИРУЕМЫХ С МОЧОЙ ЗА 1 МИН ПО МЕТОДУ АМБУРЖЕ

Исследуемый материал: мочу собирают точно за 3 ч (180 мин), немедленно направляют в лабораторию для исследования.
    
ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОЛИЧЕСТВА ФОРМЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ В 1 МЛ МОЧИ ПО МЕТОДУ НЕЧИПОРЕНКО

Исследуемый материал: сбор утренней мочи проводят по методу "трехстаканной пробы"; в лабораторию доставляют среднюю порцию мочи.

ПРОБА ПО ЗИМНИЦКОМУ

Исследуемый материал: собирают за сутки 8 порций мочи: в 6 ч утра больной опорожняет мочевой пузырь (эта порция выливается). Затем, начиная с 9 ч утра, точно каждые 3 ч собирает 8 порций мочи в отдельные банки (до 6 ч утра следующего дня). На каждой банке отмечается время сбора мочи. Все порции доставляют в КДЛ, где измеряется количество и относительная плотность каждой порции. Проба проводится при обычном питьевом режиме и питании больного, предварительной подготовки больного не требуется, но целесообразно предупредить больного о том, что желательно, чтобы количество жидкости в эти сутки не превышало 1,0—1,5 л.

Методика взятия (сбора) кала.
    Взятие материала: сбор кала для исследования осуществляется самим пациентом в соответствии с инструкциями, которые должны быть составлены в лаборатории.
Время взятия: кал для исследования доставляется в лабораторию утром, желательно, чтобы с момента дефекации до исследования прошло не более 12 ч (при условии правильного хранения — на холоду).
Так как на результаты исследования кала влияет характер пищи, а также прием лекарств, изменяющих перистальтику или цвет кала, то для получения достоверных и сравнимых результатов необходимо унифицировать условия подготовки больного и сбора материала.
Кал для исследования должен быть собран в чистую, сухую, широко-горлую посуду, желательно стеклянную (не следует собирать кал в баночки и флаконы с узким горлом, а также в коробочки, спичечные коробки, бумагу и т.д.).
Следует избегать примеси к испражнениям мочи, выделений из половых органов и других веществ, в том числе лекарств.
Если для какого-либо химического определения (например, уробилино-гена) нужно точно знать количество выделенного кала, то посуду, в которую собирают испражнения, нужно предварительно взвесить.
Подготовка пациента
Перед исследованием кала отмечается прием медикаментов, влияющих на секреторные процессы, а также усиливающих перистальтику кишечника, и медикаментов, примеси которых в кале изменяют его цвет или мешают при микроскопическом или химическом исследовании. Это касается таких лекарств, как слабительные, ваго- и симпатикотропные средства, сульфат бария, препараты висмута, железа, каолин, ректальные свечи, приготовленные на жировой основе, ферментные препараты, Н3-блокаторы и другие препараты, влияющие на процессы переваривания и всасывания.
Нельзя направлять кал на исследование после клизм, а также рентгенологического исследования желудка и кишечника (примесь бария). Исследование кала желательно проводить не ранее, чем через 2 сут после рентгенологического исследования.
При исследовании кала, основной целью которого является определение функциональной способности пищеварительного тракта, т.е. степени усвоения пищевых веществ, необходимо в течение 4—5 дней соблюдать специальную унифицированную диету, содержащую установленное количество различных пищевых продуктов. Можно использовать две диеты — Шмидта и Певзнера; диета Шмидта является щадящей, диета Певзнера представляет максимальную пищевую нагрузку для здорового человека.
Диета Шмидта: дневной рацион (распределяется на 5 приемов пищи): 1—1,5 л молока, 2—3 яйца всмятку, белый хлеб с маслом, 125 г рубленого мяса, 200 г картофельного пюре, овсяная каша; общая калорийность — 2250 кал.
Диета Певзнера: дневной рацион: 200 г белого и 200 г черного хлеба, 250 г жареного мяса, 100 г масла, 40 г сахара, жареный картофель, морковь, салаты, квашеная капуста, гречневая и рисовая каши, компот, свежие фрукты; общая калорийность — 3250 кал.
При выборе диеты необходимо учитывать состояние органов пищеварения, а также привычный характер питания. Пробную диету дают в течение 4—5 дней, копрологическое исследование проводят троекратно: на 3-й, 4-й и 5-й день (при условии ежедневного самостоятельного опорожнения кишечника). При невозможности использовать указанные диеты достаточно обычной смешанной пищи, содержащей необходимые пищевые вещества в умеренном, но достаточном количестве.
Условия доставки и хранения материала. Кал должен быть доставлен в лабораторию и исследован не позднее, чем через 8—12 ч после дефекации, хранить необходимо до исследования на холоду при температуре 3—5°С (в холодильнике).
Особенности собирания и условий хранения кала для определения отдельных показателей
Обнаружение крови: при исследовании кала с целью обнаружения скрытого кровотечения за 3 дня до анализа следует исключить из диеты мясо, рыбу, зеленые овощи, помидоры, а также лекарства, содержащие металлы (железо, медь), так как все эти вещества могут мешать в химических реакциях обнаружения крови.
Определение стеркобипиногена: для количественного определения стеркобилиногена кал обязательно должен быть свежевыделенным (исследуют не позднее 2 ч после дефекации), собран и доставлен в посуде темного стекла, необходимо защищать от действия света.
Обнаружение простейших (вегетативных форм): кал должен быть обязательно свежевыделенным — исследование необходимо проводить не позднее 15—20 мин после дефекации, т. е. еще в теплом состоянии; в остывшем кале вегетативные формы простейших быстро теряют подвижность и затем погибают. Цисты сохраняются значительно дольше, поэтому обнаружение цист можно проводить даже через несколько часов при условии сохранения кала в холодильнике (при температуре 3—5 °С), но не более 24 ч. Посуда для сбора кала должна быть чистой, сухой, без примеси воды и дезинфицирующих средств; необходимо избегать также примеси мочи и др. загрязнений (см. разделы "Методика взятия" и "Подготовка пациента").
Обнаружение гельминтов:
Для диагностики гельминтозов исследуют, кроме испражнений, соскобы с перианальных складок, дуоденальное содержимое, мочу, содержимое подногтевых пространств, мокроту, ректальную слизь и т.д.
Исследование кала на яйца гельминтов — составная часть "общего анализа кала", но может назначаться и как самостоятельное исследование. Кал для исследования забирают из разных мест разовой порции (общее количество — 10—15 г). Кал должен быть менее суточной давности, собранный в чистую стеклянную посуду. Для контроля за лечением направляют на исследование все порции фекалий, выделенные в дни приема антигельминтных средств, в лабораторию доставляются также и выделенные с испражнениями паразиты.
Соскоб с перианальных складок делают с помощью деревянного шпателя, смоченного в 50% растворе глицерина или 1% растворе соды.
Производят осторожно легкое соскабливание по всей окружности анального отверстия с поверхности перианальных складок, соскоб проводят утром до дефекации, у женщин — и до мочеиспускания. Полученный материал снимают со шпателя краем покровного стекла и помещают в каплю 50% глицерина на предметном стекле, покрывают этим же покровным стеклом и микроскопируют.
Если соскоб производят не в лаборатории и полученный материал должен быть доставлен в лабораторию через более или менее длительный интервал времени, например, при массовом обследовании, для удобства транспортировки можно использовать коробки и пузырьки от пенициллина: шпатель после соскабливания опускают в пенициллиновый пузырек с 2—3 каплями 50% раствора глицерина и ставят пузырек в ячейку коробки.
Соскоб с перианальных складок в амбулаторных условиях может проводить и сам больной: для этого используют ватный тампон в пробирке (для взятия слизи из зева), в пробирку приливают 5 мл кипяченой воды, больной утром до вставания с постели ватным тампоном, слегка отжатым о стенки пробирки, обтирает перианальные складки вокруг ануса и вкладывает тампон обратно в пробирку, доставляет пробирку с тампоном в лабораторию.
Ректальный соскоб: шпатель (глазной или деревянный) вводят в анальное отверстие на 3 см глубиной, вращательными движениями соскабливают материал со стенки кишки, затем обрабатывают и исследуют как соскоб с перианальных складок.
Соскоб из подногтевых пространств: ноготь смачивают раствором едкого натра (0,5—1%), затем маленькими ватными тампонами при помощи пинцета обтирают край ногтя и подногтевое пространство. Тампоны помещают в центрифужные пробирки и доставляют в лабораторию. Материал также можно брать спичкой или деревянным шпателем, смоченным 50% раствором глицерина.
    
Методика взятия (сбора) мокроты и подготовка пациента.
Время взятия (сбора) мокроты: утром (8—9 ч утра), натощак.
Обычно собирают утреннюю порцию мокроты до приема пищи, полученную путем откашливания. Следует избегать попадания в образец слюны и секрета носоглотки или синусов. Мокроту собирают в чистую сухую широкогорлую склянку.
Предварительно больной должен прополоскать рот и глотку кипяченой водой и вычистить зубы. Если мокроту нельзя получить путем откашливания, то получают материал из бронхов (как для цитологического исследования, см. раздел "Цитологические исследования").
Условия доставки и хранения. Желательно доставить в лабораторию и исследовать свежевыделенную мокроту как можно скорее, хотя для некоторых исследований (например, исследование на микобактерий туберкулеза) отсрочка не приносит большого вреда. При невозможности немедленного исследования мокроту необходимо хранить в прохладном месте, лучшее — в холодильнике. Нецелесообразно собирать мокроту за большой промежуток времени (более суток), так как длительное стояние приводит к размножению бактерий и аутолизу элементов мокроты.

ОСОБЕННОСТИ СБОРА И ХРАНЕНИЯ МОКРОТЫ ДЛЯ ОТДЕЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ:
ИССЛЕДОВАНИЕ МОКРОТЫ НА МИКОБАКТЕРИЙ ТУБЕРКУЛЕЗА:

Мокроту необходимо собирать в стерильную сухую посуду с крышкой. Больной должен избегать загрязнения мокротой наружных стенок банки. Если мокрота выделяется в скудном количестве, следует дать отхаркивающе средство накануне сбора и утром, можно применять аэрозольную ингаляцию, провоцирующую усиление секреции бронхов или использовать ингаляцию горячего солевого гипертонического раствора в течение 10—20 мин. Нужно следить за тем, чтобы не было передачи инфекции от одного больного другому при использовании распыляющего прибора.
Взятие материала при исследовании выпотных жидкостей.
Выпотную жидкость получают при помощи пункции серозных полостей (плевральной брюшной перикарда и др). Пункцию производит врач.
Условия доставки и хранения полученную при пункции жидкость собирают в чистую сухую посуду, в лабораторию тотчас же после пункции направляют все количество полученной жидкости. Для предотвращения свертывания и потери клеточных элементов (со сгустком) к жидкости добавляют лимоннокислый натрий (1 г на 1 л жидкости) и тщательно перемешивают стеклянной палочкой.

Методика взятия выделения женских половых органов и подготовка обследуемых
Взятие материала проводит врач-гинеколог.
Подготовка пациента: в течение 24 ч перед исследованием исключить спринцевания и применение внутривагинальных терапевтических средств.

Методика взятия. Перчатки врача должны быть без талька, зеркала — без смазки, смочены физиологическим раствором. Материал берут из заднебокового свода влагалищным шпателем или насасывают стерильной стеклянной пипеткой с резиновой грушей. Материал равномерно размазывается на предметном стекле, мазки высушивают на воздухе и доставляют в лабораторию с сопроводительным бланком (см. также раздел "Цитологические исследования").
Примечания:
1. Нельзя брать материал ватным тампоном.
2. Нельзя брать материал во время менструации.
3. При необходимости получения большого количества материала содержимое можно брать гинекологической ложечкой, при этом нельзя производить соскоб.
4. При исследовании на трихомонады каплю отделяемого (влагалища, уретры) наносят на предметное стекло и немедленно доставляют в лабораторию для обнаружения подвижных форм трихомонад.

Взятие материала при исследовании секрета предстательной железы.
Материал получают после энергичного массажа предстательной железы, проводимого врачом в течение 3—4 мин. Секрет собирают в чистую сухую пробирку. Если в результате проведения массажа выделений не получено, то после массажа собирают первую порцию мочи и в ней изучают структуры, характеризующие состояние предстательной железы.

Взятие материала при исследовании семенной жидкости.
Получение эякулята происходит с помощью вибрационного устройства в специальном кабинете. Оптимальный результат дает исследование секрета, полученного после 3—4—дневного полового воздержания. Собирают материал в чистый, стеклянный, градуированный сосуд, исследуют либо сразу после получения, либо доставляют в лабораторию в охлажденном состоянии как можно скорее (в пределах 1 ч) после семяизвержения.
Примечания:
1. Получить эякулят можно и фракционным методом, т. е. 2—3 порциями, в этом случае первая порция представляет собой секрет предстательной железы, последующие — секрет семенных пузырьков.
2. Недопустимо собирать и доставлять эякулят в лабораторию в презервативе, так как в этом случае происходит быстрое разрушение сперматозоидов.

ВЗЯТИЕ, УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ДОСТАВКИ МАТЕРИАЛА ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Для исследования гематологических показателей используется капиллярная и венозная кровь. В лечебно-профилактических учреждений Ставропольского края для гематологических исследований берется капиллярная кровь, что значительно упрощает процесс взятия крови. В то же время, в связи с применением гематологических анализаторов в лабораториях стали чаще использовать для общего клинического анализа венозную кровь. Считается, что такой способ взятия материала позволяет получить более точные результаты исследования. Взятие капиллярной крови, как правило, осуществляется лаборантом, венозной — медицинской сестрой.

Подготовка обследуемых. Взятие крови, как правило, осуществляется натощак, в утренние часы. В экстренных случаях взятие крови может проводиться в любое время суток.
Существуют общие факторы, влияющие на результат гематологических исследований: физическое напряжение (бег, быстрая ходьба, подъем по лестнице), эмоциональное возбуждение, рентгеновское облучение, положение обследуемого, прием пищи накануне исследования и др.  Для исключения этих факторов, следует соблюдать следующие условия подготовки пациентов:
- взятие крови (венозной и капиллярной) осуществляется после 15-минутного отдыха обследуемого;
- курение и прием алкоголя непосредственно перед исследованием исключаются;
- взятие крови осуществляется натощак в утренние часы (8— 10 ч), пациент во время взятия сидит, у тяжелых больных взятие крови может производиться лежа.

ВЗЯТИЕ, УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ДОСТАВКИ МАТЕРИАЛА ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ БИОХИМИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИИ ПОДГОТОВКА ОБСЛЕДУЕМЫХ (ПАЦИЕНТОВ)

Взятие материала для биохимических исследований должно проводиться до принятия обследуемым пищи (натощак). Последний прием пищи за 12 ч до взятия, что особенно важно для таких компонентов, как липиды, глюкоза, инсулин, мочевина, мочевая кислота, неорганический фосфат, аминокислоты. Исключением из этого правила являются только исследования, которые проводятся при неотложных состояниях, в любое время, но с учетом этого фактора.
Время взятия с 8 до 9 ч утра при плановых исследованиях и в любое время для экстренных случаев.
Особенности подготовки больного для определения отдельных аналитов (биохимические показатели).